Versuchsbeschreibung: Die Versuche wurden vom Landesamt für Landwirtschaft, Lebensmittelsicherheit und Fischerei, Mecklenburg-Vorpommern, genehmigt.

Zehn Mäusen wird einmalig eine Testsubstanz in die Bauchhöhle injiziert, die die Wundheilung verbessern soll. Zehn weiteren "Kontrollmäusen" wird eine Trägersubstanz ohne Wirkung verabreicht. Sechs Tage später wird bei allen Tieren unter Narkose eine sogenannte Hautfaltenkammer installiert. Diese besteht aus zwei auseinanderklappbaren Titanrahmen, zwischen die eine Falte der Rückenhaut des Tieres eingeklemmt wird. Der ca. 2 cm große Rahmen mit der eingeklemmten Haut steht senkrecht auf dem Rücken der Maus. Auf einer Seite des Rahmens wird nun ein rundes Stück der eingeklemmten Haut von 3 mm Durchmesser herausgestanzt. Die Wunde wird mit einem in den Rahmen eingesetzten Glasplättchen abgedeckt, um sie vor Austrocknung zu schützen. Am Tag 3, 6, 9, 12, 15 und 18 nach der Operation werden die Tiere erneut betäubt, um die Hautwunde unter dem Mikroskop zu untersuchen. Die Autoren schreiben, dass die Mäuse keine Beeinträchtigung bei Nahrungsaufnahme oder Schlafen zeigen. Am 18. Tag werden die Mäuse auf nicht genannte Weise getötet, um den verwundeten Hautbereich gewebekundlich zu untersuchen.

Bereich: Wundheilung

Originaltitel: Effects of systemic pretreatment with CpG oligodeoxynucleotides on skin wound healing in mice

Autoren: Bettina Hergert, Eberhard Grambow, Antje Butschkau, Brigitte Vollmar*

Institute: Institut für Experimentelle Chirurgie, Universität Rostock,. Schillingallee 691, 18057 Rostock

Zeitschrift: Wound Repair and Regeneration 2013: 21; 723-729

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4732

Versuchsbeschreibung: Die Versuche werden vom Ministerium für Ernährung, Landwirtschaft, Forsten du Fischerei Mecklenburg-Vorpommern genehmigt. Es werden 19 weibliche, 7-9 Wochen alte Ferkel von einem lokalen Züchter verwendet. Unter Narkose werden Katheter (Plastikschläuche) in Halsvene und –arterie gelegt. Dann wird den Tieren innerhalb von einer Stunde eine tödliche Dosis Eiterbakterien (Staphylococcus aureus) in die Blutbahn infundiert. Dies ruft eine Blutvergiftung hervor. Eine Stunde nach Ende der Bakterieninfusion wird mit der Therapie begonnen, indem die Tiere einem Plasmaaustausch unterzogen werden. Dazu wird das Blut der Schweine durch eine Maschine geleitet, filtriert und das Plasma (flüssiger Bestandteil des Blutes) den Tieren zurück in die Blutbahn geleitet. Diese Behandlungsmethode wird bereits in einer klinischen Studie bei menschlichen Sepsis-Patienten erprobt.

Die Ferkel werden nun in drei Gruppen unterteilt. Bei einer Gruppe wird zusätzlich zum eigenen Plasma ein künstlicher Plasmaersatz hinzugefügt, in Gruppe zwei 70% Plasmaersatz + 30% Schweineplasma (von anderen Tieren) und in Gruppe 3 100% Plasma von anderen Schweinen. Nach 4 Stunden werden Therapie und Narkose beendet. Die Schweine müssen nun die Folgen der Blutvergiftung bei vollem Bewusstsein erleiden. Die Tiere in Gruppe 1 sterben alle innerhalb von 5 Tagen. Von den sieben Schweinen in Gruppe 2 sterben 5. In Gruppe drei überleben alle bis zum 7. Tag, an dem sie durch Überdosis von Pentobarbital getötet werden. Bei der Untersuchung werden bei allen Schweinen Abszesse in Herz, Lungen und Nieren gefunden. Die Nieren weisen z.T. Schwellungen und abgestorbenes Gewebe auf. Bei drei Tieren gibt es auch Abszesse in der Milz.

Die Arbeit wurde durch die Universität Rostock unterstützt.

Bereich: Sepsisforschung

Originaltitel: Role of different replacement fluids during extracorporeal treatment in a pig model of sepsis

Autoren: Martin Sauer (1)*, Jens Altrichter (3), Thomas Mencke (1), Sven Klöhr (4), Maren Thomsen (1), Hans J. Kreutzer (2), Gabriele Nölge-Schomburg (1), Steffen R. Mitzner (3)

Institute: (1) Klinik für Anästhesiologie und Intensivmedizin, Medizinische Fakultät der Universität Rostock, Schillinggasse 35, 18057 Rostock, (2) Institut für Pathologie, Medizinische Fakultät der Universität Rostock, (3) Klinik für Nephrologie, Medizinische Fakultät der Universität Rostock, (4) Klinik für Anästhesiologie, Krankenhaus Bamberg, Bamberg

Zeitschrift: Therapeutic Apheresis and Dialysis 2013: 17(1); 84-92

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4731

Versuchsbeschreibung: Die Versuche werden vom Regierungspräsidium Darmstadt genehmigt. Die Schafe ungenannter Herkunft sind zu Beginn der Versuche 2 Jahre alt. Die Tiere werden unter Narkose operiert. Zunächst wird das Kniegelenk eröffnet, um eine Probe Knorpelgewebe aus dem unteren Ende des Oberschenkelknochens zu entnehmen. Die Knorpelzellen werden vier Wochen lang in vitro kultiviert. Dann erfolgt eine zweite Knie-Operation. Bei sechs Schafen werden aus dem Knorpel-Knochenbereich des Oberschenkelknochens zwei Stücke von je 9,4 mm Durchmesser und 1,1 mm Tiefe herausgebohrt. In die Löcher wird ein neues Gewebeersatzgerüst eingebracht, das aus Nanopartikeln, Schweinekollagen und verschiedenen künstlichen Substanzen besteht. Auf eines der beiden Gerüste werden einige zuvor kultvierte körpereigene Knorpelzellen geträufelt. Das Knie wird chirurgisch verschlossen. Bei den anderen sechs Schafen wird ein Loch gleicher Größe in das Knie-nahe Ende des Oberschenkelknochens gebohrt und mit einer Mischung aus Schweinekollagen und körpereigenen Knorpelzellen gefüllt. Die Reparatur mit körpereigenen Knorpelzellen wird bei menschlichen Patienten seit 1994 erfolgreich durchgeführt.

Sechs Wochen später werden alle Schafe auf nicht genannte Weise getötet, um zu untersuchen, inwieweit die Löcher zugewachsen sind. Bei der neuen Methode sind die Löcher größer als bei der herkömmlichen Methode.

Die Arbeit wurde durch das Bundesministerium für Bildung und Forschung unterstützt.

Bereich: Knochenchirurgie, Biomaterialforschung

Originaltitel: Biphasic scaffolds for repair of deep osteochondral defects in a sheep model

Autoren: Iris Schleicher (1)*, Katrin S. Lips (2), Ursula Sommer (2), Ines Schappat (2), Alexander P. Martin (2), Gabor Szalay (1), Sonja Hartmann (2), Reinhard Schnettler (1,2)

Institute: (1) Klinik für Unfallchirurgie, Universitätsklinikum Gießen-Marburg, Justus-Liebig-Universität Gießen, Rudolf-Buchheimerstr. 7, 35385 Gießen, (2) Labor für Experimentelle Unfallchirurgie, Justus-Liebig-Universität Gießen

Zeitschrift: Journal of Surgical Research 2012: 183; 184-192

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4730

Versuchsbeschreibung: Die Versuche werden von der Genehmigungsbehörde in Mittelfranken genehmigt. Erwachsene Long-Evans-Ratten von Harlan Winkelmann in Borchen werden paarweise (Männchen und Weibchen) zusammen in einem Käfig gehalten, um Nachkommen zu erzeugen. Die Paare bleiben für die gesamte Zeit der Studie zusammen, um mehrere Geburten pro Weibchen während des Gesamtzeitraumes zu ermöglichen. Angestrebt werden maximal 3 Würfe pro Tier. Die Tiere fangen ab einem Alter von 80 bis 120 Tagen an sich fortzupflanzen. 25 Weibchen haben einen Wurf, 20 haben zwei und vier haben drei Würfe. Zur Ermittlung der Anzahl der Jungtiere und der engmaschigen Überwachung der Mütter werden die Käfige täglich gegen Abend kontrolliert, da dies die Hauptzeit für Geburten bei Ratten ist. Einen Tag nach der Geburt werden die Mütter und die Jungen einzeln gewogen. Ansonsten werden die Tiere außer bei der wöchentlichen Reinigung nicht gestört. Eine erneute Wiegung findet am Ende der Studie (Tag 17) statt, bevor die Jungtiere durch Enthaupten getötet werden. Ihnen wird nach der Enthauptung Blut entnommen, welches auf verschiedene Bestandteile des Immunsystems untersucht wird. Es werden auf diese Weise Daten von 776 Jungtieren von 49 verschiedenen Müttern gesammelt. Bei der statistischen Auswertung werden Würfe (13 von 90) herausgerechnet, in denen mehr als ein Jungtier verstorben ist. Das weitere Schicksal der Elterntiere wird nicht erwähnt.

Die Arbeit wurde durch die Deutsche Forschungsgemeinschaft unterstützt.

Bereich: Immunologie, Versuchstierkunde, Verhaltensforschung

Originaltitel: Family matters: Maternal and litter-size effects on immune parameters in young laboratory rats

Autoren: Geraldine Prager (1,2), Volker Stefanski (3), Robyn Hudson (4), Heiko G. Rödel (1)*

Institute: (1) Institut für Tierphysiologie, Universität Bayreuth, Universitätsstraße 30, Gebäude NW1, 95440 Bayreuth, (2) Medizinische Psychologie und Verhaltensimmunbiologie, Universitätsklinikum Essen, Universität Duisburg-Essen, Essen, (3) Institut für Tierhaltung und Tierzucht, Universität Hohenheim, Hohenheim, (4) Instituto de Investigaciones Biomédicas, Universidad Nacional Autónoma de México, Mexico

Zeitschrift: Brain, Behavior, and Immunity 2010: 24; 1371-1378

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4729

Versuchsbeschreibung: Diese Experimente werden im Bundesland Baden-Württemberg genehmigt. Zebrabärblinge werden bei 27-28°C unter Standardbedingungen aufgezogen. Die Experimente werden an 3- bis 18- Monate alten Fischen durchgeführt. Es werden verschiedene genetisch veränderte Zuchtlinien als experimentelle Gruppe verwendet, Fische vom Wildtyp, d.h. Geschwister, bei denen die Genveränderung nicht eingetreten ist,dienen als Kontrollgruppe. Die Schwanzflossen der Fische werden zu 30 oder 70% abgeschnitten. Danach dürfen sich die Fische jeweils für eine unterschiedlich lange Zeit bei einer Temperatur von 26-28°C regenerieren. Nach der Regenerationsphase werden die Fische einmal täglich mit Hitzeschocks behandelt. Dazu werden alle Fische für 30 Minuten in 33-34°C warmes Wasser gesetzt und in unregelmäßigen Abständen für 1 Stunde in 37°C warmes Wasser. Zudem werden alle 12 Stunden Injektionen mit verschiedenen Dosen Retinsäure in den Bauchraum der Fische unter Narkose vorgenommen. Am Ende der Experimente werden die Gewebe der Schwanzflossen untersucht. Es ist davon auszugehen, dass alle Fische dafür getötet werden.

Die Arbeit wurde unterstützt durch die Deutsche Forschungsgemeinschaft und die Universität Konstanz.

Bereich: Regenerationsforschung, Altersforschung

Originaltitel: Osteoblast de- and redifferentiation are controlled by a dynamic response to retinoic acid during zebrafish fin regeneration

Autoren: Nicola Blum (1,2), Gerrit Begemann (1)*

Institute: (1) Entwicklungsbiologie, Universität Bayreuth, Universitätsstr. 30 Gebäude NW 1, 95440 Bayreuth, (2) RTG1331, Institut für Biologie, Universität Konstanz, Konstanz

Zeitschrift: The Company of Biologists Ltd, Development 2015: 142; 2894-2903 doi:10.1242/dev.120204

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4728

Versuchsbeschreibung: Die Versuche werden von der Tierversuchskommission Sachsen-Anhalt genehmigt.

Es werden Nacktmäuse von Harlan Winkelmann verwendet, die keine Thymusdrüse haben und daher fremde Zellen nicht abstoßen, wenn sie ihnen injiziert werden. Gruppen von Mäusen werden menschliche Keimzell- oder Eierstocktumorzellen unter der Haut an der Flanke einpflanzt. Beide Tumorzelllinien bilden stark durchblutete Tumoren in den Nacktmäusen und sind gegen verschiedene Krebsmedikamente resistent. Um zu testen, ob eine neue Wirkstoffkombination die Gefäße im Tumor zerstört, werden die Mäuse in drei Gruppen aufgeteilt und es werden zwei unterschiedlich hohe Dosen der Substanz durch Injektion in den Bauchraum verabreicht. Eine Kontrollgruppe erhält nur Kochsalzlösung. Nach spätestens 16 Tagen werden die Tiere auf nicht genannte Weise getötet, um die Tumoren zu untersuchen. Ein vermindertes Wachstum durch den Rückgang der Gefäße in den Tumoren wird gefunden.

Bereich: Krebsforschung

Originaltitel: Combretastatin A-4 derive d 5-(1-methyl-4-phenyl-imidazol-5-yl) indoles with superior cytotoxic and anti-vasculareffectson chemoresistant cancer cells and tumors

Autoren: Katharina Mahal (1), Bernhard Biersack (1), Sebastian Schruefer (1), Marcus Resch (2), Ralf Ficner (2), Rainer Schobert (1)*, Thomas Mueller (3)

Institute: (1) Organische Chemie, Universität Bayreuth, Universitätsstr. 30 Gebäude NW I, 95547 Bayreuth, (2) Institut für Molekularbiologie Universitätsmedizin Göttingen, Göttingen, (3) Klinik für Innere Medizin IV, Onkologie/Hämatologie, Martin-Luther-Universität Halle-Wittenberg, Halle-Saale

Zeitschrift: European Journal of Medicinal Chemistry 2016: 118; 9-20

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4727

Versuchsbeschreibung: Die Wistar Farbratten werden bei Charles River in Sulzfeld gekauft. Die Fungizide (Wirkstoffe zum Abtöten von krank machenden Pilzen) Cyproconazol, Epoxiconazol, Prochloraz, Propiconazole, Tebuconazole und Phenobarbital werden in Fütterungsversuchen über 28 Tage in unterschiedlichen Dosierungen und Kombinationen an Gruppen von Ratten getestet. In der kurzen Zeit zeigt keine Ratte offensichtliche Auffälligkeiten, obwohl bei der Sektion bei allen Tieren Leberschäden nachgewiesen werden. Die Ratten werden nach den vier Wochen betäubt und mit Kohlendioxid getötet. Diese Arbeit wurde vom Bundesinstitut für Risikobewertung (BfR) finanziert.

Bereich: Toxikologie

Originaltitel: Combination effects of azole fungicides in male rats in a broad dose range

Autoren: F. Schmidt (1), Philip Marx-Stoelting (1)*, Wolfram Haider (2), Tanja Heise (1), Carsten Kneuer (1), Mechthild Ladwig (1,3), Stefanie Banneke (1), Svenja Rieke (1), Lars Niemann (1)

Institute: (1) Bundesinstitut für Risikobewertung (BfR), Diedersdorfer Weg 1, 12277 Berlin, (2) Institut für Tierpathologie, Berlin, (3) Institut für Tierschutz, Tierverhalten und Versuchstierkunde, Freie Universität Berlin, Berlin

Zeitschrift: Toxicology 2016: 355-356; 54-63

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4726

Versuchsbeschreibung: Die Versuche werden von der Bezirksregierung Düsseldorf genehmigt. Die Mäuse werden bei Harlan Laboratories gekauft. Um einen Sauerstoffmangel nach der Geburt bei Babys zu simulieren, werden 9 Tage alte Mäusejunge für 90 Minuten bei 6% Sauerstoff, anstatt den normalen 21%, gehalten. Zwei Stunden nach dem zugefügten Sauerstoffmangel werden manche Mäuse mit unterschiedlichen Dosen des Wirkstoffs LEV (Levetiracetam) gespritzt. LEV ist ein Arzneimittel, das für die klinische Behandlung von Epilepsie bei Säuglingen verwendet wird. Die Mäuse in der Gruppe mit der höchsten Dosierung zeigen reduzierte Bewegungen und Nahrungsaufnahme, so dass sie mehr als 20% ihres Gewichtes verlieren. Diese Tiere werden "aus der Studie herausgenommen", d.h. getötet.

Nach der Behandlung mit dem Wirkstoff werden manche Tiere einer Hypothermie (Kälte) ausgesetzt. Kälte wird als Therapie bei Säuglingen mit Sauerstoffmangel eingesetzt und soll neurologische Schäden verhindern. Die Mäusejungen werden dazu mit Hilfe eines Wasser gekühlten Geräts für vier Stunden auf eine Temperatur von 32°C runter gekühlt.

Zwischen dem 18. und 37. Lebenstag werden drei Tests durchgeführt, um Angst und kognitive Funktion der Tiere zu analysieren. Die Tests erfolgen während der Schlafphase unter Rotlicht. 1. Im "Elevated Plus Maze"-Test wird eine Maus in ein plusförmiges Labyrinth gesetzt, das aus zwei geschlossenen und zwei offenen Armen besteht. Es wird beobachtet, ob sie sich eher in den schützenden geschlossenen oder den Angst einflößenden offenen Armen aufhält. 2. Beim "Novel-Object-Recognition"-Test wird geprüft, ob sich eine Maus neuen, in eine Box gelegten Objekten neugierig oder ängstlich gegenüber verhält. 3. Beim "RotaRod"-Test werden die motorischen Fähigkeiten auf einer rotierenden Stange untersucht. Die Tiere werden im Alter von 11 – 60 Tagen mit einer intravenösen Injektion von Chloralhydrat getötet.

Diese Arbeit wird vom IFORES-Programm Forschungsförderung der Uniklinik Essen und der C.D. Stiftung unterstützt.

Bereich: Neugeborenenkunde

Originaltitel: Dose-dependent effects of levetiracetam after hypoxia and hypothermia in the neonatal mouse brain

Autoren: Katja Strasser (1,2), Laura Lueckemann (1,3), Verena Kluever (1), Sinthuya Thavaneetharajah (1), Daniela Hoeber (1), Ivo Bendix (1), Joachim Fandrey (4), Astrid Bertsche (1,5)*, Ursula Felderhoff-Mueser (1)

Institute: (1) Klinik für Kinderheilkunde I, Perinatalzentrum, Universitätsklinikum Essen, (2) Kinderklinik des Uni-Klinikums Erlangen, Universität Erlangen-Nürnberg, Erlangen, (3) Institut für Medizinische Psychologie und Verhaltensimmunbiologie, Universitätsklinikum Essen, (4) Institut für Physiologie, Universität Duisburg-Essen, Essen, (5) Klinik und Poliklinik für Kinder- und Jugendmedizin, Sozialpädiatrisches Zentrum (SPZ), Universitätsklinikum Leipzig, Leipzig

Zeitschrift: Brain Research 2016. pii: S0006-8993(16)30402-4. doi: 10.1016/j.brainres.2016.05.040

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4725

Versuchsbeschreibung: Die Versuche werden von der Regierung von Unterfranken genehmigt. Es werden mehrere verschiedene ingezüchtete Mäuselinien verwendet die zum Teil selber gezüchtet werden oder von folgenden Laboren stammen: Anjana Rao (San Diego), Laurie Glimcher (New York), Patrick Matthias (Basel), Michael Reth, Elias Hobeika (Freiburg) und Axel Roers (Dresden). Durch Genmanipulation haben die Mäuse Defizite in ihrer Immunabwehr. Den Mäusen wird unter Narkose der Rücken rasiert und an sieben Tagen in Folge Aldara-Creme auf die nackte Haut aufgetragen. Die Creme wird als Human-Arzneimittel bei Hautkrebs und Warzen eingesetzt. Bei den Mäusen verursacht die Creme eine starke Hautentzündung mit Rötung, Schuppung und Verdickung. Durch diese Hautentzündung soll eine Psoriasis beim Menschen simuliert werden. Nach sieben Tagen werden die Mäuse auf nicht genannte Weise getötet und seziert.

Diese Arbeit wurde von der Deutschen Forschungsgemeinschaft, von der Wilhelm Sander-Stiftung, der Deutschen Krebshilfe / Dr Mildred Scheel Stiftung und dem Forschungszentrum Immuntherapie (FZI) der Johannes Gutenberg-Universität Mainz, unterstützt.

Bereich: Dermatologie

Originaltitel: NFATc1 supports imiquimod-induced skin inflammation by suppressing IL-10 synthesis in B cells

Autoren: Hani Alrefai (1,2,3), Khalid Muhammad (1), Ronald Rudolf (1), Duong Anh Thuy Pham (1), Stefan Klein-Hessling (1), Amiya K. Patra (1), Andris Avots (1), Valesca Bukur (4), Ugur Sahin (4,5), Stefan Tenzer (6), Matthias Goebeler (2), Andreas Kerstan (2), Edgar Serfling (1)*

Institute: (1) Institut für Pathologie Julius-Maximilians-Universität Würzburg, Julius-Schneider-Str. 2, 97080 Würzburg, (2) Klinik und Poliklinik für Dermatologie, Venerologie und Allergologie, Universitätsklinikum Würzburg, Julius-Maximilians-Universität Würzburg, (3) Faculty of Medicine, Department of Medical Biochemistry, Liver Laboratory, Mansoura University, Mansoura, Egypt, (4) TRON gGmbH - Translationale Onkologie, Universitätsmedizin der Johannes Gutenberg-Universität Mainz, Mainz, (5) Universitätsmedizin der Johannes Gutenberg-Universität Mainz, Mainz, (6) Institut für Immunologie, Universitätsmedizin der Johannes Gutenberg-Universität Mainz, Mainz

Zeitschrift: Nature Communications 2016: 7; 11724. doi: 10.1038/ncomms11724

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4724

Versuchsbeschreibung: Es werden verschiedene Mäuselinien verwendet, die von den Jackson Laboratories, USA, dem RIKEN BioResource Center stammen oder selbst gezüchtet werden. Zur Herstellung solcher Mäuselinien werden diese normalerweise über mehrere Generationen mit "normalen" Mäusen gekreuzt. Das Ziel ist, Mäuse zu erzeugen, die spontan ein Schwannoma entwickeln, einen Nervenscheidentumor, der beim Menschen durch einen Gendefekt hervorgerufen wird. Die Mäuse mit diesem künstlich erzeugten Gendefekt entwickeln allerdings kein Schwannoma, sondern verschiedene Nervenschäden oder Leberkrebs.

Um doch noch Schwannomas untersuchen zu können, wird Mäusen unter Narkose ein Hinterbein aufgeschnitten und der Ischiasnerv wird mit einer Arterienklemme 20 Sekunden lang gequetscht. Die Mäuse erhalten alle zwei Tage Aspirin in die Bauchhöhle gespritzt. Sieben Monate nach der Verletzung wird das Hinterbein der Tiere computertomografisch untersucht. Acht Monate nach der Verletzung werden die Mäuse auf nicht genannte Weise getötet und seziert.

Diese Arbeit wird von vom SFB 604, der Deutschen Forschungsgemeinschaft und der Krebshilfe unterstützt.

Bereich: Neuropathologie, Pathologie

Originaltitel: The importance of nerve microenvironment for schwannoma development

Autoren: Alexander Schulz (1), Robert Bu?ttner (1), Christian Hagel (2), Stephan L. Baader (3), Lan Kluwe (4,5), Johannes Salamon (6), Victor-Felix Mautner (4), Thomas Mindos (7), David B. Parkinson (7), Jeffrey R. Gehlhausen (8), D. Wade Clapp (8), Helen Morrison (1)*

Institute: (1) Leibniz-Institut für Altersforschung, Fritz-Lipmann-Institut (FLI), Jena, (2) Institut für Neuropathologie, Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg, (3) Anatomisches Institut, Anatomie und Zellbiologie, UKB Universitätsklinikum, Rheinische Friedrich-Wilhelms-Universität Bonn, (4) Neurologische Klinik, Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg, (5) Klinik für Mund-, Kiefer- und Gesichtschirurgie, Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg. (6) Institut für Biomedizinische Bildgebung, Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg, (7) Plymouth University Peninsula Schools of Medicine and Dentistry, Plymouth, Großbritannien, (8) Department of Pediatrics, Herman B Wells Center for Pediatric Research Department of Biochemistry, Indiana University School of Medicine, Indianapolis, IN, USA

Zeitschrift: Acta Neuropathologica 2016: DOI 10.1007/s00401-016-1583-8

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4723